INMUNOLOGÍA
CARACTERIZACIÓN
INMUNOFENOTÍPICA DE LEUCEMIAS Y LINFOMAS
(Primera
Parte)
Marianela
Trejos Herrera*, Virginia Chacón
Zamora**
Summary
Immunologic marker studies of the lymphoid leukemias have greatly
improved the precision of diagnostics of the disorders by providing specific
information regarding the lineage and stage of maturation of the malignant
cells. Such studies have also enhanced our understanding of normal
lymphocite development, permitting reproducible identification of lymphoid
cells in discrete developmental stages. The LLA is an immunophenotypically
heterogeneous disease with clinically important subtypes representing clonal
expansions of lymphoblasts at different stages of maturation. Knowledge
of immunologic features of leukemic cells has been essential for the generation
of phenotype - specific response data in the context of modern therapy
for LLA. In the chronic lymphoproliferative disorders, although the
information derived from immunophetyping is essential to define the type
of the lymphoid population and is hepful to distinguish between the varios
conditions, the clinical, cytological and histopathological features of
the disease are also important in order to establish a more precise diagnostic.
Introducción
La citometría de flujo constituye la metodología
de elección para el inmunofenotipaje de leucemias y de linfomas
y contribuye enormemente a la investigación del origen celular de
estas hemopatías, a su diagnóstico y clasificación
y a la detección de enfermedad mínima residual. Entre
sus aportaciones merece destacar la repercusión clínica que
tiene la clasificación inmunológica de las LLA (20,11).
En la caracterización fenotípica de los Síndromes linfoproliferativos
crónicos (SLC), la citometría de flujo permite la identificación
por FSC (luz dispersada frontalmente, representa tamaño) y SSC (luz
dispersada lateralmente, representa granularidad) de ciertas células
neoplásicas como el tricoleucocito y la célula plasmática
(10,22). Así, lo característico de la tricoleucemia
y del mieloma múltiple es la aparición de células de
mayor "tamaño" y "granularidad" que los linfocitos en una zona de
sangre periférico y/o médula ósea donde habitualmente
no se detecta celularidad (21,29). Adicionalmente posibilita establecer
el carácter mono o policlonal de gran parte de las linfocitosis periféricas
y medulares mediante la tinción triple de cadenas Kappa, Lamda y CD
19 (1,2) (figura 15). Por otra parte, La Citometría de flujo
permite establecer el origen celular y el estadío de maduración
de los SLC. Así se sabe que la mayoría de estos son de
origen B, en menor proporción de origen T, siendo las neoplasias
de células NK (CD16 +, CD56 +, CD3 -, TCR alb -) muy raras (22).
En los Linfomas no Hodgkin ( LNH) la presencia de linfocitos T y B normales
en las adenopatías tumorales es un obstáculo para la identificación
de las células neoplásicas. Sin embargo, el análisis
simultáneo de varios marcadores y la cuantificación de ADN,
dada la elevada incidencia de aneuploidías en esta enfermedad, permite
obviar esta dificultad. La caracterización fenotípica
mediante la Citometría de Flujo de las Leucemias y los linfomas ha
proporcionado además información acerca de la situación
de las poblaciones linfocitarias B, T y NK a lo largo de la evolución
de los transplantes en médula ósea (22).
El análisis de marcadores inmunológicos leucemias
y Linfomas no Hodgkin es importante para:
- Clasificación
de leucemias y Linfomas no Hodgkin.
- Reconocimiento
de subtipos de leucemias y Linfomas no Hodgin, los cuales difieren en
comportamiento clínico y resistencia a la terapia.
- Reconocimiento
de asociación entre fenotipos inmunológicos de leucemias
y Linfomas no Hogdkin y aberraciones cromosómicas.
- Detección
de dos malignidades en un paciente.
- Caracterización
de subpoblaciones dentro de una malignidad.
- Detección
de un número bajo de células malignas.
Determinación del estadío del Linfoma no Hodgkin,
especialmente LNH-T TdT +.
CUADRO 1
PATRONES DE REACTIVIDAD
DE ACUERDO
AL LINAJE BLÁSTICO
|
LINAJE B
|
LINAJE T
|
MIELOIDE
|
CD19
|
+
|
-
|
-
|
CytCD22
|
+
|
-
|
-
|
CD7
|
-
|
+
|
-
|
CytCD3
|
-
|
+
|
-
|
CD33
|
-
|
-
|
+
|
CytCD13
|
-
|
-
|
+
|
10-20%
de las LMA son positivas para CD7
Leucemia linfocítica
aguda
Uno de los más importantes marcadores tempranos de los linfoblastos
es la enzima Transferasa desoxinucleotidil terminal (TdT), la cual fue
originalmente encontrada en alta concentración en el timo.
La TdT es actualmente demostrada en la rutina en el núcleo de linfoblastos
de linaje T y B por medio de anticuerpos policlonales, usando inmunofluorescencia
o inmunoperoxidasa. La TdT también puede ser expresada en algunos
mieloblástos leucémicos tempranos, pero a pesar de esto,
es de valor diagnóstico tanto en LLA como en la crisis linfoblástica
de la Leucemia Granulocitíca Crónica (3).
Las leucemias
derivadas de precursores linfoides tempranos o más maduros pueden
ser identificados objetivamente por la reactividad con uno o más
AcMc y algunos reactivos policlonales (cuadro l). La expresión
de los antígenos T o B correlaciona en las células B con
el rearreglo del gen de la cadena pesada de la inmunoglobulina y en las
células T con la reorganización genética del receptor
T (TCR) a, b, g y d (3,6).
El linaje LLA-B
esta definido por la expresión de al menos dos de los siguientes
tres marcadores tempranos de células B: CD19, CD79a (mb-1) o CD22.
El antígeno mb-1 esta expresado por las inmunoglobulinas citoplasmáticas
y las unidas no covalentemente a la membrana y el marcador CD22, dentro
del desarrollo linfoide B, es expresado tempranamente en el citoplasma y
más tarde en la membrana (7). Cuatro categorías de LLA-B
designadas de B-1 a B-IV fueron establecidas de acuerdo al grado de diferenciación
linfoide B de los blastos (7) (cuadro 2):
- LLA-B
* ( CD 19 + y/o CD79a + y/o CD22 +)
- LLA-pro-B
(B-1)( No expresión de otros antígenos de diferenciación
B).
- LLA común
(B -II) CD10 +
- LLA-Pre-B
(B-III) lgM citoplasmática +
- LLA-B-madura
(B-IV) kappa o lamda citoplasmática o superficial.
Positivo
al menos con dos o tres marcadores. La mayoría de los casos
son TdT +, HLA-DR + excepto B-IV la cual es frecuentemente TdT -.
CUADRO 2
MUNOFENOTIPO
DE LAS CELULAS
MoAB |
"Nulo"
|
Común
|
Pre-B
|
B
|
TdT
|
+
|
+
|
+
|
-
|
HLA-DE
|
+
|
+
|
+
|
+
|
CD19
|
+
|
+
|
+
|
+
|
cCD22
|
+
|
+
|
+
|
+
|
cD10
|
-
|
+
|
+
|
-
|
ClgM
|
-
|
-
|
+
|
+
|
SIgM
|
-
|
-
|
-
|
+
|
Anticuerpos
monoclonales negativos para linaje t y linaje mieloide
Se considera que la forma más madura del linaje B de la LLA (B
IV) puede ser definida por la expresión de inmunoglobulinas de superficie
(SmIg) o por la expresión citoplasmática de una de las cadenas
ligeras de inmunoglobulinas (7).
El linaje T
esta definido por la expresión citoplasmática o de membrana
del antígeno CD3. La reactividad celular con los antígenos
CD2 o CD7 no es suficiente para definir un caso como LLA-T (cuadro 3). Se han definido cuatro subgrupos, desde
LLA-pro T hasta LLA-T madura, de acuerdo al grado de diferenciación
tímica y dos grupos (A y B) de acuerdo a la expresión en
la membrana de las cadenas a / b o g / d del TCR (7):
LLA-T* (CD3
+ CITOPLASMATICO/ MEMBRANA)
-LLA-pro-T (T-I)
CD7 +
-LLA-pre-T (T-II
CD2 + y/o CD5 +y/o CD8 +
-LLA-T-cortical (T-III)
CDla +
-LLA-T-madura (T-IV)
CD 3 + en la membrana, CD la -
-LLA-T
/
+ (grupo a)
anti-TCR
/
+
-LLA-T
/
+ (grupo b)
anti-TCR
/
+
* la mayoría de los casos son TdT + , HLA-DR - , CD34 - pero
estos marcadores no son considerados para el diagnóstico o clasificación
de la enfermedad.
CUADRO 3
INMUNOFENOTIPO
DE LA LLAS DEL LINAJE T
|
T INMADURA
|
T MADURA
|
TdT
|
+
|
+
|
CD7
|
+
|
+
|
CytCD3
|
+
|
+
|
CD2
|
-
|
+
|
CD1
|
-
|
-/+
|
mCD3
|
-
|
-/+
|
cytTCR
|
-/+
|
+
|
CD4 o CD8
|
-
|
-/+
|
Resultados
negativos con anticuerpos monoclonales B y mieloides
La LLA-T cortical es definida por la expresión de CD la sin considerar
la reactividad con otros marcadores celulares T, incluyendo el antígeno
CD3 en la membrana. La identificación de la LLA CD la + puede
ser relevante ya que éste representa un subgrupo diferente con buenos
resultados y mejores respuestas a los corticosteroides, quizás a
través de la activación del mecanismo apoptótico (11).
Dentro de las LLA-T, dos subgrupos fueron definidos de acuerdo a la expresión
en la membrana de las cadenas a/b del receptor celular T (TCR) ( Grupo
A) y de las cadenas g/d del TCR ( Grupo B) en asociación con el
CD3. Reportes preliminares sugieren que estos deos grupos pueden
representar dos subtipos distintos de LLA-T desde el punto de vista clínico
y fenotípico (1,12). El antígeno CDIO puede ser positivo
en algunas LLA-T pero, a diferencia de la LLA de linage B, éste
marcador no se toma en cuenta para la clasificación de los varios
subtipos. El CD4 puede no ser considerado como marcador específico
estricto de linaje T porque también es expresado en monocitos y
con una frecuencia relativamente alta en Leucemias Mieloides Agudas (30).
La expresión de TdT fue considerada importante para el diagnóstico
de LLA, para distinguirla de las malignidades linfoides maduras, como
por ejemplo el Linfoma de células grandes; sin embargo, la Enzima
TdT como también otros marcadores asociados con células precursoras
tales como CD34 y HLA-DR clase 11 no son considerados en la clasificación
de la enfermedad. Además, se considero un subgrupo especial
de LLA (linaje B o T) con expresión de uno o dos marcadores panmieloides
sin llenar el criterio para ser catalogada como Leucemia Aguda Bifenotípica
(BAL) (5). Las leucemias linfoides agudas típicas en las
cuales hay expresión de antígenos mieloides y linfoides,
son producto de una expresión genética inapropiada, más
que de una detención de la maduración de las células
progenitoras bipotenciales capaces de diferenciación tanto mieloide
como linfoide (9). Por otra parte, la identificación de la
expresión aberrante de marcadores mieloides en las LLA y linfoides
en las LMA, aunque en cuanto a su significado pronóstico siga constituyendo
tema de discusión (9, 13, 17, 26), puede ser de gran ayuda para
la identificación de enfermedad mínima residual en estos
pacientes (9).
(Continúa en Próxima edición)
* Laboratorio
Clínico, Hospital Calderón Guardia
** Laboratorio Clínico,
Hospital San Vicente de Paúl